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SPE应用手册手册介绍
1 食品安全
1.1 QuEChERS EN方法用于黄瓜中农药多残留的检测(Copure® QuEChERS)
1.2 QuEChERS EN方法用于大米中农药多残留的检测(Copure® QuEChERS)
1.3 QuEChERS EN方法用于菜芯中农药多残留的检测(Copure® QuEChERS)
1.4 QuEChERS AOAC方法用于茄子中农药多残留的检测(Copure® QuEChERS)
1.5 QuEChERS AOAC方法用于黄瓜中农药多残留的检测(Copure® QuEChERS)
1.6 QuEChERS AOAC方法用于大米中农药多残留的检测(Copure® QuEChERS)
1.7 QuEChERS AOAC方法用于菜心中农药多残留的检测(Copure® QuEChERS)
1.8 牛奶中苯甲酸检测的固相萃取方法(Copure® MAX)
1.9 牛奶中氟苯尼考检测的固相萃取方法(Copure® HLB)
1.10 普洱中农药多残留检测的固相萃取方法(Copure® GCB/NH2)
1.11 乳制品中多种有机氯农药残留检测的固相萃取方法(Copure® Florisil)
1.12 水产品中氟苯尼考检测的固相萃取方法(Copure® C18)
1.13 水产品中孔雀石绿检测的固相萃取方法(Copure® ALA/PRS)
1.14 水产品中孔雀石绿检测的固相萃取方法(Copure® ALA)
1.15 水产品中孔雀石绿检测的固相萃取方法(Copure® ALN)
1.16 水产品中喹乙醇检测的固相萃取方法(Copure® MAX)
1.17 饲料中苯甲酸检测的固相萃取方法(Copure® MAX)
1.18 咸鸭蛋中苏丹红染料的检测方法(Copure® 苏丹红检测柱)
1.19 饮料中合成着色剂检测的固相萃取方法(Copure® 聚酰胺小柱)
1.20 植物油中苯并(a)芘检测的固相萃取方法(Copure® 苯并芘检测柱)
1.21 猪肉中兽药多残留检测的固相萃取方法(Copure® HLB)
1.22 饲料中孔雀石绿检测的固相萃取方法(Copure® ALN/PRS)
1.23 动物性食品中磺胺类药物多残留检测的固相萃取方法(Copure® MCX)
1.24 动物源食品中硝基呋喃类代谢物残留检测的固相萃取方法(Copure® HLB)
1.25 动物源性食品中克伦特罗等3种β-受体激动剂残留检测的固相萃取方法(Copure® MCX)
1.26 动物源性食品中四环素类兽药残留量检测的固相萃取方法(Copure® HLB)
1.27 蜂蜜中寡糖成分的测定(Silibase™蜂蜜检测柱)
1.28 蜂蜜中四环素类药物残留检测的固相萃取方法(Copure® HLB)
1.29 进出口食品中罗丹明B的检测的固相萃取方法(Copure® ALN)
1.30 辣椒粉中苏丹红染料的检测方法(Copure® 苏丹红检测柱)
1.31 辣椒油中苏丹红染料的检测方法(Copure® 苏丹红检测柱)
1.32 牛奶中氯霉素检测的固相萃取方法(Copure® C18)
1.33 牛奶中氢化可的松检测的固相萃取方法(Copure® Silica)
1.34 食品中三聚氰胺检测的固相萃取方法(Copure® MCX)
1.35 蔬菜中多种农药残留检测的固相萃取方法(Copure® Florisil)
1.36 水产品中喹乙醇检测的固相萃取方法(Copure® HLB)
1.37 水体中布洛芬检测的固相萃取方法(Copure® HLB)
1.38 动物源食品中氯霉素检测的固相萃取方法(Copure® HLB)
1.39 食品中喹诺酮检测的固相萃取方法(Copure® HLB)
1.40 动物源性食品中β-受体激动剂检测的固相萃取方法(Copure® MCX)
1.41 食品中苏丹红染料检测的固相萃取方法(Copure® 苏丹红检测柱)
1.42 动物源性食品中氯霉素检测的固相萃取方法(Copure® C18)
1.43 蔬菜水果中农药多残留检测的固相萃取方法(Copure® Florisil)
1.44 蔬菜中农药多残留检测的固相萃取方法(Copure® NH2)
1.45 生姜中涕灭威及其代谢物检测的固相萃取方法(Copure® NH2 )
2 纺织&皮革检测
2.1 皮革脱色专用柱效果对比(Copure® 皮革脱色专用柱)
2.2 皮革中六价铬含量的测定(Copure® 皮革脱色柱)
2.3 纺织品中禁用偶氮染料检测的固相萃取方法(Copure® 偶氮染料检测柱)
3 临床诊断
3.1 化妆品中氢化可的松检测的固相萃取方法(Copure® HLB)
3.2 尿液中三环抗抑郁药检测的快速萃取方法(Copure® SLE)
3.3 血清中布洛芬药物检测的快速萃取方法(Copure® SLE)
3.4 血清中非甾体类消炎药检测的快速萃取方法(Copure® SLE)
3.5 血清中皮质甾类药物检测的快速萃取方法(Copure® SLE)
3.6 婴儿沐浴露中尼泊金酯药物检测的快速萃取方法(Copure® SLE)
4 环境保护

普洱中农药多残留检测的固相萃取方法(Copure® GCB/NH2)

2016-11-24 17:01:36
admin
1139
最后编辑:admin 于 2017-10-10 10:09:45
简介:本研究利用固相萃取作为样品前处理方法,GC-ECD和LC-MS/MS作为分析方法,检测普洱中的农药残留水平。该方法操作简便,可简化样品前处理过程,减少有机溶剂的使用。

一、实验目的

本研究利用固相萃取作为样品前处理方法,GC-ECD和LC-MS/MS作为分析方法,检测普洱中的农药残留水平。该方法操作简便,可简化样品前处理过程,减少有机溶剂的使用。

二、应用范围

本方法适用于茶叶中有机磷类、有机氯类、拟除虫菊酯类和氨基甲酸酯类农药多残留的测定。

三、实验材料

biocomma®Copure®  GCB/NH2固相萃取柱500mg/500mg/6mL(Cat. No. CONHGC655)。

四、实验步骤

1、样品提取

称取粉碎好的普洱2 g(精确到0.001 g),加入50 mL离心管中,加入10 mL乙腈,剧烈振荡1 min,静置30min,4000 r/min离心5 min。上清液待净化。

2、SPE柱净化

(1) 活化:GCB/NH2固相萃取柱中加入约2 cm高无水硫酸钠,使用前使用10 mL乙腈-甲苯(3:1,v/v)活化。
(2) 上样和洗脱:当溶液液面到达柱吸附层表面时,立即倒入上述待净化溶液4  mL, 用鸡心瓶接收流出液,逐步加入25 mL乙腈-甲苯(3:1,v/v)洗涤小柱,收集上述所有流出液于鸡心瓶中。
(3) 重新溶解:流出液于40  ℃水浴中旋蒸至1 mL左右,加入2  mL乙腈转移至10 mL试管中,于40 ℃下氮气吹干,加入1 mL乙腈溶解残渣,0.22 μm微孔滤膜过滤,分别供GC-ECD和LC-MS/MS上机测试。

3、仪器条件

1.GC-ECD条件
气相仪器:Agilent 7890A
色谱柱:Agilent J&W HP-5, 30 m × 0.32 mm,0.25 μm或者相当者
进样口温度:220 ℃
检测器温度:300 ℃
升温程序:
180 ℃(保持2 min)
以10 ℃/min升温到230 ℃(保持2 min)
以2 ℃/min升温到260 ℃(保持2 min)
以25 ℃/min升温到270 ℃(保持1.6 min)
载气:氦气
流速:1.6 mL/min
进样方式:分流进样,分流比10:1
2.LC-MS/MS条件
色谱柱:Venusil ASB C18(2.1 mm×150 mm, 5 μm)
质谱仪:API 4000
流动相:A:  0.1% HCOOH+10 mM乙酸铵(取1 mL HCOOH和0.77 g乙酸铵至1 L水溶液中)
B:  甲醇溶液
洗脱方式:梯度洗脱
表1  流动相梯度洗脱程序

流速:0.35 mL/min
柱温: 40 ℃
进样体积:5 μL
离子源:电喷雾(ESI)
扫描模式:正离子模式
检测方式:多反应监测(MRM)
表2  质谱仪离子源参数

表3  氨基甲酸酯类农药各组分名称、保留时间及母离子和子离子检测离子对

五、实验结果

1、普洱中农药多残留的添加回收结果
表4  0.25 mg/kg普洱中有机氯和拟除虫菊酯类农药多残留的添加回收结果

表5  0.05 mg/kg普洱中氨基甲酸酯类农药多残留的添加回收结果

2、普洱中农药多残留检测色谱图

图1  添加水平为0.25  mg/kg普洱中有机氯和拟除虫菊酯类农药多残留检测色谱图

图2  添加水平为0.0625 mg/kg普洱中氨基甲酸酯类农药多残留检测色谱图